［入門］キャピラリー電気泳動

シリカ製の中空キャピラリー（内径100μm以下；長さ約８０cm）内に緩衝液（buffer）を満たします。キャピラリーの片端に、極微量の試料を加えてから、両端に電圧（－３０～＋３０ｋＶ）を掛け、電気泳動をおこないます（図１）。

移動速度は、試料成分毎に、荷電、大きさ、形といった特性の違いにより、多くの場合に差異があります。このために、多様な試料成分を分離することができます。キャピラリーの他端で、移動してくる試料成分を検出します。種々様々な検出方法が使用されていますが、もっとも基本的であるのは吸光度測定であり、フォトダイオードアレイあるいはフォトマルで検出が行われています。電場を掛け始めてから検出されるまでの時間、ピークの高さ・面積、そして吸光スペクトルにより、各成分の定性・定量が可能です。
試料の分離が起こる原因は様々であり、キャピラリー電気泳動では、それらを巧みに使い分けて、活用しています。試料成分のどのような特性に主として着目するかによって、キャピラリー電気泳動を、五種の方式に大別することができます。それぞれにおいて、着目する特性は、電気泳動(electrophoresis)、動電クロマトグラフィー(electrokimetic chromatography)、分子ふるい（molecular sieving）、等電点（isoelectric point）、等速電気泳動（isotachophoresis）です。

キャピラリー内に緩衝液を満たし、一端から試料を注入し（通常はプラス極側）、両端に電場をかけます。その名の通り、もっとも基本的な方式です。この方式を、自由ゾーン電気泳動（free zone capillary electrophoresis）と呼ぶことがあります。他の介在物のない緩衝液、つまり自由溶液（free solution）を媒体とするので、この名前が使われるのです。他の方式は、これに色々と手を加えて生まれてきたと、云えるでしょう。 試料各成分はその電気泳動移動度に応じた速度で移動します。これが電気泳動です。正に荷電した成分はマイナス極側へ、負に荷電した成分はプラス極へと移動します。プラス極側に試料を添加したら、負に荷電した試料成分は、キャピラリーから出てしまうと、心配されることでしょう。でも、大丈夫です。シリカ製のキャピラリーを用いていますと、表面の負荷電が原因して、電気浸透流という流れが、常にマイナス極側に流れています（図２）。

それは、随分と速い流れで、負荷電を持っているものでも、それに逆らってプラス極側に移動できるものは、滅多にありません。試料成分は、電気泳動による移動速度（Vep）と電気浸透による移動速度（Veo）のベクトル和で移動するのです。絶対値について、Ｖeo＜Ｖepとなることは稀ですから、試料は荷電の正負に関わりなく、全てがマイナス極側に移動して、検出されます。 無機から有機にわたる様々なイオンの分析に、広く活用されています。高分子化合物では、蛋白質への適用がもっとも成果を挙げています。核酸や合成高分子電解質は、電気泳動において特殊な振る舞いを示すので、必ずしも高い分離能が期待できません。それらへの、この方式の適用にあたっては、注意が必要です。

電気的に中性である複数の成分が試料中に存在している場合には、それらを電気泳動で分離することは不可能でした。しかし、巧妙な方式が工夫されて、本来は電気泳動しない試料もキャピラリー電気泳動の対象になる局面が開かれました。

硫酸ドデシルナトリウム（ドデシル硫酸ナトリウムと呼ばれることが多く、ＳＤＳと略称されています）は代表的な陰イオン性界面活性剤です。その陰イオンは、ある濃度（限界ミセル濃度（critical micelle concentration: CMC））以上になると１００個近くが会合して、ミセルと呼ばれる負に荷電した集合体を形成します。

キャピラリー電気泳動において、緩衝液にＳＤＳをCMC を充分に超える濃度になるように加えておきます。ミセルは、プラス極側にＶmc（符号マイナス）の速度で移動しようとしますが、速度がＶeoの電気浸透流に逆らいきれず、マイナス極側にＶeo＋Ｖmcの速度で移動して行きます。ＳＤＳミセルは、様々な物質を捉えます。すべてが、ミセルに取り込まれる成分は、ミセルと行動を共にするので、もっとも長い時間を要して、検出部にたどり着くでしょう。他方、まったくミセルに取り込まれない成分は、電気浸透流と同じ速度で移動して、比較的に速やかに検出部に行き着くでしょう（図３）。

つまり、試料成分はミセルへの親和性、言いかえれば分配係数、が低いものから高いものへと、順番に分離されて検出されることになります。一群のフェノール類の混合物を試料としますと、見事に各成分が分離されます（図４）。

ミセルに親和性の高いものといえば、親油性のもの、あるいは両親媒性のものがあります。

クロマトグラフィーにおいては、移動相と固定相のあいだの分配係数の差異にもとづいて、試料成分を分離しています。上記の場合には、ミセルは固定されてはいませんが、擬似的な固定相と見なすことができます。それで、電気泳動の一種ではありますが、この方式にはミセル動電クロマトグラフィーという名称が使われています。動電という用語は聞き慣れないと感じる方も多いでしょう。これは、電気浸透が動電現象と呼ばれるものの一種であることに、由来しています。

ここでは、荷電のないものを取り上げて話を進めてきましたが、荷電を持っていても、ミセルに親和性があれば試料になりうるでしょう。ただし、この種のものは、取り込まれるとミセルの電気泳動挙動を左右するので、副次的な要素が加わることは、承知しておかねばなりません。SDS以外の界面活性剤を用いる、あるいは二種類以上の界面活性剤を用いることによって、ミセル動電クロマトグラフィーに、色々の変種を導入できます。

今日、数ある電気泳動法のなかで最も多くの人々に使用されているのは、ポリアクリルアミドゲル電気泳動です。ゲル電気泳動においては、分子のサイズが大である程、ゲルの網目構造より受ける抵抗が大きいため、遅く電気泳動されます。これを、分子ふるい(molecular sieving）効果と呼んでいます。この結果、本来の自由溶液中の電気泳動と比較すると、試料各成分のサイズに関して著しく敏感な分離を行うことができます。

ポリアクリルアミドゲルを形成させる場所をキャピラリー内に替えると、この高い分離能をキャピラリー電気泳動に持ち込むことができます（図５）。

キャピラリーゲル電気泳動（capillary gel electroophoresis）が、それです。キャピラリー電気泳動の利点の一つは、媒体を自由に詰め替えることです。しかし、ゲルを形成してしまうと、詰め替えはできません。しかも、ゲルの性能は急速に劣化するので、繰り返し使用には不向きです。

ところで、高分子溶液は、“分子ふるい”としてゲルに類似した機能を果たすことができます。キャピラリー中では、対流が起こり難いので、高分子溶液がゲルの代役を立派に果たすことができます。条件の設定次第では、高分子溶液には代役以上の働きさえも、期待することができます。この方式はキャピラリー高分子溶液電気泳動（capillary polymer solution electrophoresis）と呼ぶべきでしょうか。

キャピラリー内に、様々な等電点を持つ両性電解質（ampholyte）と試料の混合物を満たします。プラス極は酸に浸します。それは、両性電解質の中で最も等電点が低いものより、さらに酸性の強いものでなければなりません。マイナス極には、塩基を満たします。こちらでは、最も等電点の高い両性電解質よりも塩基性が強いことが、求められます。両電極に電場を掛けると、酸性のものはプラス極へ、塩基性のものはマイナス極に泳動します。これは、添加した両性電解質と試料成分の何れについても云えることです。やがて、各両性電解質と試料各成分は自己の荷電がゼロになるｐＨの位置で停止します。この様にして、試料各成分を、それらの等電点に基づいて分離することが可能です（図６）。

試料各成分を含む媒体は、はキャピラリー内に止まります。そこで、媒体をポンプを用いて押し出す、あるいはプラス極側の電極液をマイナス極側のそれに替える、あるいは逆を行って、媒体のｐＨを変化させて、試料各成分を電気泳動によって移動させる、といった処置によって、検出が行われます。この方式は、タンパク質あるいはペプチドの混合物を対象として行われることが多いようです。種類によって、種々様々な等電点を持つ点では、タンパク質やペプチドの右に出るものはありません。分離ばかりでなく、タンパク質の等電点の決定にも活用されています。

試料混合物の前端に何れの成分よりも速やかに電気泳動するイオンを含む媒体、後端に逆の性格の媒体、試料液は両者の中間という設定で電気泳動を行います。最終的には、電気泳動移動度を異にする試料成分は、それらの絶対値が大なものから順に並んで、同じ速度で移動することになります。条件を選ぶことによって、目的の成分を濃縮する、あるいは成分間に一種のスペーサーを配置して分離の効率を高めることができます。

キャピラリーは細い管です。その管の内部で電気泳動をおこなうため、サンプルは少量ですみます。また、高電圧をかけることができるため、短時間に高分離能で測定が可能という特長を持っています。
他の分離分析法と比較しても、多くのメリットを持っています。例えば、

などです。加えて、高価な有機溶媒を使用しないため経済的であり、廃液処理の問題も非常に少なくてすみます。

■ 高速液体クロマトグラフィー（HPLC）との比較

■ イオンクロマトグラフィー（IC)との比較